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* Laissez jeûner chiens et chats pendant 12 hrs. | * Laissez jeûner chiens et chats pendant 12 hrs. | ||
| − | == | + | ==Evitez stress et efforts== |
| − | * | + | *Car la contraction de la rate a un effet sur les valeurs hématologiques. |
| − | * | + | *L’angoisse fait augmenter ou diminuer le taux de glucose. |
| − | + | *Donner un sédatif au patient si nécessaire. | |
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| − | == | + | ==Prévenez l’hémolyse et la coagulation== |
| − | [[Hemolyse]] | + | [[Hemolyse/fr | L’hémolyse]] influence beaucoup de paramètres dont parfois les valeurs augmentent et parfois diminuent. La présence de caillots invalide l’hématologie et les paramètres de coagulation et peut causer des obturations des appareils de mesures. Donc à prevenir! |
| − | * | + | * En cas de prise de sang difficile ou de ponctions multiples il y a du liquide provenant du tissu environnant qui est aspiré. Ceci cause une agrégation des thrombocytes, une augmentation de potassium et même un début de coagulation. |
| − | * | + | * Une surpression exagérée endommage les cellules aspirées et fait collapser les vaisseaux sanguins. |
| − | * | + | * Enlevez l’aiguille de la seringue avant de remplir les tubes. |
| − | * | + | * Laissez couler prudemment le sang par le bord du tube. |
| − | * | + | * Tous les tubes sont à mélanger doucement (5x). Ne pas mélanger ou mélanger trop faiblement peut provoquer l’apparition de caillots ; Mélanger trop violemment provoque de l’hémolyse. |
| − | == | + | ==Evitez les défauts analytiques== |
| − | * ''' | + | *'''Identifiez toujours les tubes'''. L’erreur est humaine, donc aussi la confusion d’échantillons au laboratoire. Le marquage des tubes donne une sécurité et une traçabilité complémentaire. N’oubliez pas un marquage spécifique des tubes destinés aux essais dynamiques (cortisol avant-après/ACTH, acides biliaires pre-post prandiale, courbe glucose). |
| − | * | + | *Assurez- vous que le type de tubes prélevés est compatible avec les analyses désirées. Les tubes nécessaires sont mentionnés sur le formulaire de demande avec un code correspondant. |
| − | * | + | *Mettez le bouchon (couleur) correspondant au tube prélevé. |
| − | * | + | *Choisissez des tubes compatibles avec la quantité de sang désirée. |
| − | * | + | **Pour les animaux très petits il existe des tubes de micro collection de 0,5 à 1 mL. |
| − | + | **Pour les animaux de compagnie plus grands il existe des tubes jusqu’à 10 mL. | |
| − | ** | + | *Prenez assez de sang ; assurez-vous des quantités exigées. |
| − | * | + | *A moins qu’on utilise le vacuum, le bouchon peut se détacher quand les tubes sont trop remplis. Cela peut être évité en aspirant l’air avec une seringue et une aiguille. |
| − | * | + | *Respectez la séquence conseillée des tubes. |
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Huidige versie van 15 dec 2014 om 11:05
Inhoud
Méthode
La méthode de prise de sang sera différente en fonction de l’espèce , de la taille de l’animal, du diamètre de la veine à ponctionner, de l’attitude de l’animal mais aussi de votre préférence et de votre expérience personnelle. Choisissez surtout une procédure connue et confortable pour le patient. Comme pour tout traitement : c’est en forgeant qu’on devient forgeron.
Nous mettons 3 systèmes à disposition:
- Vacutainer avec aiguille papillon
- Seringue avec aiguille papillon
- Simple aiguille et tube
Pour les endroits de ponction, veuillez lire: techniques de prise de sang par espèce.
Evitez la lipémie
- Car elle interfère avec les déterminations colorimétrique et turbidimétrique (souvent en analyses biochimiques).
- Laissez jeûner chiens et chats pendant 12 hrs.
Evitez stress et efforts
- Car la contraction de la rate a un effet sur les valeurs hématologiques.
- L’angoisse fait augmenter ou diminuer le taux de glucose.
- Donner un sédatif au patient si nécessaire.
Prévenez l’hémolyse et la coagulation
L’hémolyse influence beaucoup de paramètres dont parfois les valeurs augmentent et parfois diminuent. La présence de caillots invalide l’hématologie et les paramètres de coagulation et peut causer des obturations des appareils de mesures. Donc à prevenir!
- En cas de prise de sang difficile ou de ponctions multiples il y a du liquide provenant du tissu environnant qui est aspiré. Ceci cause une agrégation des thrombocytes, une augmentation de potassium et même un début de coagulation.
- Une surpression exagérée endommage les cellules aspirées et fait collapser les vaisseaux sanguins.
- Enlevez l’aiguille de la seringue avant de remplir les tubes.
- Laissez couler prudemment le sang par le bord du tube.
- Tous les tubes sont à mélanger doucement (5x). Ne pas mélanger ou mélanger trop faiblement peut provoquer l’apparition de caillots ; Mélanger trop violemment provoque de l’hémolyse.
Evitez les défauts analytiques
- Identifiez toujours les tubes. L’erreur est humaine, donc aussi la confusion d’échantillons au laboratoire. Le marquage des tubes donne une sécurité et une traçabilité complémentaire. N’oubliez pas un marquage spécifique des tubes destinés aux essais dynamiques (cortisol avant-après/ACTH, acides biliaires pre-post prandiale, courbe glucose).
- Assurez- vous que le type de tubes prélevés est compatible avec les analyses désirées. Les tubes nécessaires sont mentionnés sur le formulaire de demande avec un code correspondant.
- Mettez le bouchon (couleur) correspondant au tube prélevé.
- Choisissez des tubes compatibles avec la quantité de sang désirée.
- Pour les animaux très petits il existe des tubes de micro collection de 0,5 à 1 mL.
- Pour les animaux de compagnie plus grands il existe des tubes jusqu’à 10 mL.
- Prenez assez de sang ; assurez-vous des quantités exigées.
- A moins qu’on utilise le vacuum, le bouchon peut se détacher quand les tubes sont trop remplis. Cela peut être évité en aspirant l’air avec une seringue et une aiguille.
- Respectez la séquence conseillée des tubes.
