Prise de sang par sorte d'animal
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Inhoud
Général
- Mettez tous les accessoires à portée de main.
- Désinfectez toujours l’endroit de ponction.
- Au niveau hygiène, le système vacutainer est idéal. *Pourtant la veine doit être assez large ainsi que l’espace de manœuvre pour la manutention de l’aiguille-adaptateur et du tube de prélèvement.
- Ne jamais plier les aiguilles.
- Afin d’éviter un hématome, appuyez assez longtemps sur l’endroit de ponction.
Mammifères
Chien
- Vena cephalica: instructions video
- Vena jugularis: 18-21G X 1''1, 5-20 cc
- Vena saphena
Chat
- Vena jugularis: 21-20G X 1,5''1, 5-10 cc vidéo instruction
- Vena cephalica
Lapin
- Enduisez d’abord de l’ EMLA crème (anesthésique local) sur la veine.
- Puisque le temps prothrombine est relativement court, le sang coagule rapidement. Prehéparinisation de l’aiguille et de la séringue peut éviter cela.
- Les tubes de micro collection sont recommandés.
- Vena jugularis : 22-27G, 1-5 cc, le plus utilisé, grand volume, plus difficile chez des animaux obèses ou avec plis de peau épais.
- Vena saphena lateralis : 22-27G, 1-2 cc
- Vena auricularis marginalis : 21-23G aiguille papillon, 1-2 cc
- Vena cephalica : réservé pour IV cathétérisation
Pour un résume des possibiltés voyez ces instructions vidéos
Furet
- Utilisez une sédation (midazolam, Isofluraan) si vous manquez d’expérience. Tenez compte des valeurs hématologiques réduites.
- La peau est épaisse surtout dans la nuque, donc utilisez une nouvelle aiguille à chaque ponction.
- Les tubes à micro collection sont recommandés.
- Vena jugularis : 25G, 1-3 cc, méthode plus courante pour un grand volume
- Vena cava cranialis : 25G, 1-3 cc, manière plus rapide pour un grand volume, le cœur est situé profondément dans le long thorax ; être sûr pour autant que l’animal ne bouge pas.
- Vena saphena : 22-30G, 1 cc, petits volumes (CBC, Hct, glucose).
- Vena cephalica : reservez pour IV cathétérisation.
Pour un résume des possibilités: voyez ces instructions vidéos
Cheval
- Vena jugularis vidéo instruction
Bovin
- Vena coccygea ventralis vidéo instruction
- Vena jugularis vidéo instruction
Mouton et chèvre
- Vena jugularis vidéo instruction
Porc
- Vena jugularis
- Vena cava cranialis
- 10 kg: 20G, aiguille 1''
- 45 kg: 18G aiguille 1.5''
- 100 kg: 18G aiguille 2’''
- Coche: 16G aiguille 4''
- Vena coccygea ventralis: 20G aiguille 1'', petits volumes
- Vena auricularis: 20G aiguille 5/8'', petits volumes, facilement contaminé
Reptiles
- Utilisez des tubes héparinés, attention, l’EDTA cause de l’hémolyse.[1] En outre le tube hépariné peut être utilisées aussi bien pour l’ hématologie que pour la biochimie.
- Les tubes à micro collection sont recommandés.
Serpent
- Vena coccygea ventralis: 21-25G x 5/8-1''
- Cardiocentèse: 21-25G x 5/8-1''[2]
- Vena palatina: 25G x 5/8''
Lézard
- Vena coccygea ventralis: 22-25G, 1-1.5'' vidéo instruction
- Vena abdominalis ventralis: 22-25G, 1-1.5''
- Vena jugularis: surtout approprié pour les caméléons[3]
Tortue
- Vena jugularis: veine droite souvent plus grand qu’à gauche
- Subcarapaciale sinus vaineux: utile quand la tête ne peut pas s’étendre
- Vena coccygea dorsalis: risque de contamination lymphatique
- Sinus vaineux occipital
- Plexus vaineux brachial, plexus vaineux femoral, veine femorale: souvent contamination lymphatique
Oiseaux
- Utilisez des tubes héparinés pour l’hématologie aussi bien que pour la biochimie
- Pour les petits animaux les tubes micro collection sont recommandés
- Utilisez les aiguilles les plus petites : <50g, 27-28G (aiguille insuline) ; >100 g, aiguille 25G
- Vena jugularis : surtout la veine droite, faites attention de ne pas occasionner un hématome vidéo instruction poussin
- Vena basilica (veine d’aile): facilement un hématome mais sans conséquences graves vidéo instruction poulet
- Vena metatarsalis media (veine de la patte): à éviter chez les oiseaux prédateurs vidéo instruction canard
Références
- ↑ Muro et al.: Effects of lithium heparin and tripotassium EDTA on hematologic values of Hermann's tortoises (Testudo hermanni). J. Zoo Wildl. Med. 1998;29:40-4. PMID: 9638624.
- ↑ Isaza et al.: Assessment of multiple cardiocentesis in ball pythons (Python regius). Contemp Top Lab Anim Sci 2004;43:35-8. PMID: 15636554.
- ↑ Cuadrado et al.: Comparison between tail and jugular venipuncture techniques for blood sample collection in common chameleons (Chamaeleo chamaeleon). Vet. J. 2003;166:93-7. PMID: 12788022.
