Bloedafnametechniek per diersoort

Uit wikilab
Ga naar: navigatie, zoeken
Aan deze pagina zijn wijzigingen gemaakt die niet voor vertaling zijn gemarkeerd.

Algemeen

  • Zet alle benodigdheden klaar en binnen handbereik.
  • Desinfecteer steeds de punctieplaats.
  • Vanuit staalkwaliteit en hygiënestandpunt is het vacuumsysteem het meest ideale systeem. De vene moet evenwel voldoende groot zijn en er is voldoende manoevreerruimte nodig om naald-adapter-bloedbuis te hanteren. Dit laatste verbetert met ervaring en is soms te verhelpen door gebruik te maken van een vlindernaald.
  • Buig naalden nooit om! Hierdoor verliezen ze scherpte en hun silicone-coating waardoor ze minder goed doorschuiven.
  • Oefen na punctie lang genoeg druk uit op de punctieplaats om een hematoom te voorkomen.
  • Mits vaakbekwaamheid en ervaring is het kortknippen van nagels of andere lichaamsdelen nooit nodig en levert diagnostisch inferieure stalen op.

Zoogdieren

Hond

  • Vena cephalica: Video-instructies
  • Vena jugularis: 18-21G X 1''1, 5-20 cc
  • Vena saphena

Kat

Konijn

  • Smeer vooraf EMLA crème (lokaal anestheticum) op de vene
  • Door de relatief korte prothrombinetijd, stolt het bloed snel. Prehepariniseren van naald en spuit kan dit helpen voorkomen.
  • Micro-collectietubes aanbevolen.
  1. Vena jugularis: 22-27G, 1-5 cc, meest gebruikte toegangsweg, groot volume, moeilijker bij obese dieren of dikke nekplooien.
  2. Vena saphena lateralis: 22-27G, 1-2 cc, let op voor stampen
  3. Vena auricularis marginalis: 21-23G vlindernaald, 1-2 cc let op voor schudden
  4. Vena cephalica: reserveer voor IV kathederisatie

Voor een excellent overzicht van de mogelijkheden, bekijk deze videoinstructies

Fret

  • Sedeer (Midazolam, Isofluraan) indien geen of weinig ervaring. Hou wel rekening met verlaagde hematologiewaarden.
  • Dikke huid, vooral over de nek. Gebruik telkens een nieuwe naald bij herhaalde punctie.
  • Micro-collectietubes aanbevolen
  1. Vena jugularis: 25G, 1-3 cc, meest courante methode voor groot volume
  2. Vena cava cranialis: 25G, 1-3 cc, snelste manier voor een groot volume, het hart ligt diep in de lange thorax, veilig zolang het dier niet beweegt.
  3. Vena saphena: 22-30G, 1 cc, kleine volumes (CBC, Hct, glucose)
  4. Vena cephalica: reserveer voor IV cathederisatie

Voor een excellent overzicht van de mogelijkheden, bekijk deze videoinstructies

Paard

Rund

Schaap en geit

Varken

  • Vena jugularis
  • Vena cava cranialis
    • 10 kg: 20G 1'' naald
    • 45 kg: 18G 1.5'' naald
    • 100 kg: 18G 2'' naald
    • Zeug: 16G 4'' naald
  • Vena coccygea ventralis: 20G 1'' naald, kleine volumes
  • Vena auricularis: 20G 5/8'' naald, kleine volumes, makkelijk gecontamineerd

Reptielen

Slang

  1. Vena coccygea ventralis: 21-25G x 5/8-1''
  2. Cardiocentesis: 23-25G x 5/8-1''. Uit onderzoek by Pythons bleek seriele punctie goed verdragen te worden. [2]
  3. Vena palatina: 25G x 5/8''.

Video-instructies

Hagedis

  1. Vena coccygea ventralis: 22-25G, 1-1.5'' Video-instructies
  2. Vena abdominalis ventralis:: 22-25G, 1-1.5''
  3. Vena jugularis: vooral geschikt bij kameleons [3]

Schildpad

  1. Vena jugularis: rechter vene dikwijls groter dan links
  2. Subcarapaciale veneuze sinus: nuttig wanneer de kop niet kan gestrekt worden
  3. Vena coccygea dorsalis: hoog risico voor lymfecontaminatie
  4. Occipitale veneuze sinus
  5. Brachiale veneuze plexus, femorale veneuze plexus, femorale vene: dikwijls lymfecontaminatie

Video-instructies

Vogels

  • Gebruik heparine-tubes, hier kan zowel hematologie als biochemie op uitgevoerd worden.
  • Voor kleine dieren zijn micro-collectietubes aanbevolen.
  • Gebruik de kleinst mogelijke naalden: <50 g, 27-28G (insulinenaald).; >100 g, 25G naalden
  1. Vena jugularis: vooral rechter vene, opletten voor hematoom [http://partnersah.vet.cornell.edu/veterinarians/avian-diagnostic-sample-collection/blood-chicks Video-instructies kuiken}
  2. Vena basilica (vleugelvene): makkelijk hematoom maar zonder erge gevolgen Video-instructies kip
  3. Vena metatarsalis media (pootvene): te vermijden bij roofvogels Video-instructies eend

Video-instructies

Referenties

  1. ↑ Muro et al.: Effects of lithium heparin and tripotassium EDTA on hematologic values of Hermann's tortoises (Testudo hermanni). J. Zoo Wildl. Med. 1998;29:40-4. PMID: 9638624.
  2. ↑ Isaza et al.: Assessment of multiple cardiocentesis in ball pythons (Python regius). Contemp Top Lab Anim Sci 2004;43:35-8. PMID: 15636554.
  3. ↑ Cuadrado et al.: Comparison between tail and jugular venipuncture techniques for blood sample collection in common chameleons (Chamaeleo chamaeleon). Vet. J. 2003;166:93-7. PMID: 12788022.
Overgenomen van "http://wikilab.zoolyx.be/mediawiki/index.php?title=Bloedafnametechniek_per_diersoort&oldid=7453"