Uitstrijkje/fr: verschil tussen versies

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Regel 6: Regel 6:
 
*Etui de protection pour transport
 
*Etui de protection pour transport
  
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==Procedure==
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==Procédure==
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# Leg een draagglaasje vlak op een werkoppervlak met de langste zijde in de richting van de latere strijkbeweging;
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#Déposez une lame porte objet sur la table
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# Identificeer het thv de matte rand met potlood;
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#Marquez la lame au crayon du côté du bord mat.
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# Zuig een hoeveelheid staal op met behulp van de glazen pasteurpipet dmv capilllariteit;
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#Aspirez l’échantillon avec une pipette Pasteur en verre capillaire.
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# Plaats met de pipet een klein druppeltje (2 mm ø) staal net boven de matte rand ;
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#Déposez une petite  goutte (diamètre 2 mm) juste à côté du bord mat.
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# Zette het tweede glaasje in een hoek van 30-45° in het midden van het draagglaasje;
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#Mettez la 2ième lame (l’étaleur) en oblique (sous 30-45°) au milieu de la lame.
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# Keer een beetje terug tot het glaasje onderaan met zijn achterkant de druppel raakt;
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#Touchez la goutte en repoussant la lame étaleuse (donc en tirant la goutte).
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# Door capillariteit zal de druppel zich in de breedte verdelen maar wacht niet te lang, anders neigen WBC langs de randen te accumuleren;
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#La goutte se repartira le long du bord de l’étaleur. #N’attendez pas trop longtemps afin d’éviter l’accumulation de globules rouges.
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# Beweeg het glaasje - nog steeds in een hoek van 30-45° - in een soepele beweging over het draagglaasje van je weg
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#Soulevez progressivement l’étaleur, toujours en le tenant sous 30-45°. Le frottis doit s’arrêter à environ 1-2 cm de l’autre extrémité de la lame.
  
 
{|
 
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|style="color:red" align="center" | FOUT
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|style="color:red" align="center" | FAUX
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|style="color:green" align="center" | JUIST
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|style="color:green" align="center" | JUSTE
 
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|[[File:Smear-wrong.png|350x350px|link=]]
 
|[[File:Smear-wrong.png|350x350px|link=]]
Regel 24: Regel 24:
 
|}
 
|}
  
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Deze korte video-opname laat het allemaal nog eens duidelijk zien.
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Voyez le vidéo:
  
 
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==Problemen==
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==Problèmes rencontrés==
 
[[File:Dna strands.jpg|right|150 px]]
 
[[File:Dna strands.jpg|right|150 px]]
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# '''Te veel''' materiaal. Dit resulteert in te dikke uitstrijkjes die microscopisch niet of moeillijk beoordeeld kunnen worden. Eigenlijk moet al het materiaal uitgestreken zijn  als men het einde van het draagglaasje bereikt. Aan de bovenkant mag er dus praktisch niets meer te zien zijn.
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#'''Trop de matière''': le frottis étant trop épais et pas examinable au microscope. En principe TOUTE la matière de l’échantillon doit être étalée à la fin de la lame.
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# '''Te weinig''' materiaal. Dit resulteert in dunne uitstrijkjes die een verkeerd beeld geven van de cellulariteit.
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#'''Trop peu de matière''': le frotti étant trop mince donne une image fausse de la cellularité.
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# '''Te vast''' materiaal (bvb verkaasde etter of geaspireerd vast weefsel) strijkt moeilijk uit. Tijdens microscopie ziet men diep donkere velden celmateriaal die men met geluk enkel langs de rand kan beoordelen. Men kan dit voorkomen door het staal met een kleine hoeveel fysiologisch water eerst te suspenderen en van deze suspensie het uitstrijkje te maken.
+
# Matière '''trop dense''':  Lors de l’examen microscopique on aperçoit  des zones foncées (accumulations cellulaires) uniquement examinables aux bords. On peut éviter cela en diluant d’abord  l’échantillon avec une solution physiologique.
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# '''Vettig''' materiaal strijkt wel uit maar droogt slecht aan de lucht. Dit is een belangrijk gegeven op zich en vaak indicatief voor een lipoma. Noteer dit op het aanvraagformulier.
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#Un échantillon '''graisseux''' est étalable sur un frottis mais sèche difficilement à l’air. C’est une information importante et souvent indicative pour le diagnostic de lipome. Notez le sur la feuille de demande.
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# '''Stuk strijken''' door over de staaldruppel te gaan en deze voor zich uit te duwen ipv hem mee te trekken, of door meerdere keren te strijken. Microscopisch krijgt men lange strepen uiteengereten kernmateriaal te zien (zie foto). Van intacte cellen is soms geen sprake meer. Hetzelfde effect kan men krijgen wanneer men geaspireerd materiaal opnieuw langs de naald eruit spuit. Daarom altijd de naald van de spuit verwijderen!
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#'''Destruction''' de la goutte d’échantillon en poussant la goutte au lieu de le ‘tirer’ ou en cas de frottement multiples. L’image microscopique présente des cellules et noyaux déchirés. On aperçoit à peine les cellules intactes. Le même effet est obtenu par l’injection de matière aspirée par aiguille. Donc enlevez toujours l’aiguille de la seringue.
  
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[[Category:Staalname]]
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[[Category:Prélèvement |Frottis]]

Huidige versie van 16 dec 2014 om 01:48

Accessoires

Slide container.png
  • 2 lames porte objet à bord mat
  • Crayon
  • Pipette Pasteur en verre ou seringue (sans aiguille)
  • Etui de protection pour transport

Procédure

  1. Déposez une lame porte objet sur la table
  2. Marquez la lame au crayon du côté du bord mat.
  3. Aspirez l’échantillon avec une pipette Pasteur en verre capillaire.
  4. Déposez une petite goutte (diamètre 2 mm) juste à côté du bord mat.
  5. Mettez la 2ième lame (l’étaleur) en oblique (sous 30-45°) au milieu de la lame.
  6. Touchez la goutte en repoussant la lame étaleuse (donc en tirant la goutte).
  7. La goutte se repartira le long du bord de l’étaleur. #N’attendez pas trop longtemps afin d’éviter l’accumulation de globules rouges.
  8. Soulevez progressivement l’étaleur, toujours en le tenant sous 30-45°. Le frottis doit s’arrêter à environ 1-2 cm de l’autre extrémité de la lame.
FAUX JUSTE
Smear-wrong.png Smear.svg

Voyez le vidéo:

Problèmes rencontrés

Dna strands.jpg
  1. Trop de matière: le frottis étant trop épais et pas examinable au microscope. En principe TOUTE la matière de l’échantillon doit être étalée à la fin de la lame.
  2. Trop peu de matière: le frotti étant trop mince donne une image fausse de la cellularité.
  3. Matière trop dense: Lors de l’examen microscopique on aperçoit des zones foncées (accumulations cellulaires) uniquement examinables aux bords. On peut éviter cela en diluant d’abord l’échantillon avec une solution physiologique.
  4. Un échantillon graisseux est étalable sur un frottis mais sèche difficilement à l’air. C’est une information importante et souvent indicative pour le diagnostic de lipome. Notez le sur la feuille de demande.
  5. Destruction de la goutte d’échantillon en poussant la goutte au lieu de le ‘tirer’ ou en cas de frottement multiples. L’image microscopique présente des cellules et noyaux déchirés. On aperçoit à peine les cellules intactes. Le même effet est obtenu par l’injection de matière aspirée par aiguille. Donc enlevez toujours l’aiguille de la seringue.
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