Frottis

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Accessoires

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  • 2 lames porte objet à bord mat
  • Crayon
  • Pipette Pasteur en verre ou seringue (sans aiguille)
  • Etui de protection pour transport

Procédure

  1. Déposez une lame porte objet sur la table
  2. Marquez la lame au crayon du côté du bord mat.
  3. Aspirez l’échantillon avec une pipette Pasteur en verre capillaire.
  4. Déposez une petite goutte (diamètre 2 mm) juste à côté du bord mat.
  5. Mettez la 2ième lame (l’étaleur) en oblique (sous 30-45°) au milieu de la lame.
  6. Touchez la goutte en repoussant la lame étaleuse (donc en tirant la goutte).
  7. La goutte se repartira le long du bord de l’étaleur. #N’attendez pas trop longtemps afin d’éviter l’accumulation de globules rouges.
  8. Soulevez progressivement l’étaleur, toujours en le tenant sous 30-45°. Le frottis doit s’arrêter à environ 1-2 cm de l’autre extrémité de la lame.
FAUX JUSTE
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Voyez le vidéo:

Problèmes rencontrés

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  1. Trop de matière: le frottis étant trop épais et pas examinable au microscope. En principe TOUTE la matière de l’échantillon doit être étalée à la fin de la lame.
  2. Trop peu de matière: le frotti étant trop mince donne une image fausse de la cellularité.
  3. Matière trop dense: Lors de l’examen microscopique on aperçoit des zones foncées (accumulations cellulaires) uniquement examinables aux bords. On peut éviter cela en diluant d’abord l’échantillon avec une solution physiologique.
  4. Un échantillon graisseux est étalable sur un frottis mais sèche difficilement à l’air. C’est une information importante et souvent indicative pour le diagnostic de lipome. Notez le sur la feuille de demande.
  5. Destruction de la goutte d’échantillon en poussant la goutte au lieu de le ‘tirer’ ou en cas de frottement multiples. L’image microscopique présente des cellules et noyaux déchirés. On aperçoit à peine les cellules intactes. Le même effet est obtenu par l’injection de matière aspirée par aiguille. Donc enlevez toujours l’aiguille de la seringue.