Frottis
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Accessoires
- 2 lames porte objet à bord mat
- Crayon
- Pipette Pasteur en verre ou seringue (sans aiguille)
- Etui de protection pour transport
Procédure
- Déposez une lame porte objet sur la table
- Marquez la lame au crayon du côté du bord mat.
- Aspirez l’échantillon avec une pipette Pasteur en verre capillaire.
- Déposez une petite goutte (diamètre 2 mm) juste à côté du bord mat.
- Mettez la 2ième lame (l’étaleur) en oblique (sous 30-45°) au milieu de la lame.
- Touchez la goutte en repoussant la lame étaleuse (donc en tirant la goutte).
- La goutte se repartira le long du bord de l’étaleur. #N’attendez pas trop longtemps afin d’éviter l’accumulation de globules rouges.
- Soulevez progressivement l’étaleur, toujours en le tenant sous 30-45°. Le frottis doit s’arrêter à environ 1-2 cm de l’autre extrémité de la lame.
FAUX | JUSTE |
Voyez le vidéo:
Problèmes rencontrés
- Trop de matière: le frottis étant trop épais et pas examinable au microscope. En principe TOUTE la matière de l’échantillon doit être étalée à la fin de la lame.
- Trop peu de matière: le frotti étant trop mince donne une image fausse de la cellularité.
- Matière trop dense: Lors de l’examen microscopique on aperçoit des zones foncées (accumulations cellulaires) uniquement examinables aux bords. On peut éviter cela en diluant d’abord l’échantillon avec une solution physiologique.
- Un échantillon graisseux est étalable sur un frottis mais sèche difficilement à l’air. C’est une information importante et souvent indicative pour le diagnostic de lipome. Notez le sur la feuille de demande.
- Destruction de la goutte d’échantillon en poussant la goutte au lieu de le ‘tirer’ ou en cas de frottement multiples. L’image microscopique présente des cellules et noyaux déchirés. On aperçoit à peine les cellules intactes. Le même effet est obtenu par l’injection de matière aspirée par aiguille. Donc enlevez toujours l’aiguille de la seringue.