Bloedafnametechniek per diersoort/fr: verschil tussen versies

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[http://www.youtube.com/watch?v=5RluUKv5Asw?rel=0 Video-instructies]
 
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===Schildpad===
 
===Schildpad===

Versie van 15 dec 2014 om 16:41

Général

  • Mettez tous les accessoires à portée de main.
  • Désinfectez toujours l’endroit de ponction.
  • Au niveau hygiène, le système vacutainer est idéal. *Pourtant la veine doit être assez large ainsi que l’espace de manœuvre pour la manutention de l’aiguille-adaptateur et du tube de prélèvement.
  • Ne jamais plier les aiguilles.
  • Afin d’éviter un hématome, appuyez assez longtemps sur l’endroit de ponction.

Mammifères

Chien

  • Vena cephalica : instructions video
  • Vena jugularis : 18-21G X 1''1, 5-20 cc
  • Vena saphena

Chat

Lapin

  • Enduisez d’abord de l’ EMLA crème (anesthésique local) sur la veine.
  • Puisque le temps prothrombine est relativement court, le sang coagule rapidement. Prehéparinisation de l’aiguille et de la séringue peut éviter cela.
  • Les tubes de micro collection sont recommandés.
  1. Vena jugularis : 22-27G, 1-5 cc, le plus utilisé, grand volume, plus difficile chez des animaux obèses ou avec plis de peau épais.
  2. Vena saphena lateralis : 22-27G, 1-2 cc
  3. Vena auricularis marginalis : 21-23G aiguille papillon, 1-2 cc
  4. Vena cephalica : réservé pour IV cathétérisation

Pour un résume des possibiltés voyez ces instructions vidéos

Furet

  • Utilisez une sédation (midazolam, Isofluraan) si vous manquez d’expérience. Tenez compte des valeurs hématologiques réduites.
  • La peau est épaisse surtout dans la nuque, donc utilisez une nouvelle aiguille à chaque ponction.
  • Les tubes à micro collection sont recommandés.
  1. Vena jugularis : 25G, 1-3 cc, méthode plus courante pour un grand volume
  2. Vena cava cranialis : 25G, 1-3 cc, manière plus rapide pour un grand volume, le cœur est situé profondément dans le long thorax ; être sûr pour autant que l’animal ne bouge pas.
  3. Vena saphena : 22-30G, 1 cc, petits volumes (CBC, Hct, glucose).
  4. Vena cephalica : reservez pour IV cathétérisation.

Pour un résume des possibilités: voyez ces instructions vidéos

Cheval

Bovin

Mouton et chèvre

Porc

  • Vena jugularis
  • Vena cava cranialis
    • 10 kg: 20G, aiguille 1''
    • 45 kg: 18G aiguille 1.5''
    • 100 kg: 18G aiguille 2’''
    • Coche: 16G aiguille 4''
  • Vena coccygea ventralis: 20G aiguille 1'', petits volumes
  • Vena auricularis: 20G aiguille 5/8'', petits volumes, facilement contaminé

Reptiles

  • Utilisez des tubes héparinés, attention, l’EDTA cause de l’hémolyse.[1] En outre le tube hépariné peut être utilisées aussi bien pour l’ hématologie que pour la biochimie.
  • Les tubes à micro collection sont recommandés.

Serpent

  1. Vena coccygea ventralis: 21-25G x 5/8-1''
  2. Cardiocentèse: 21-25G x 5/8-1''[2]
  3. Vena palatina: 25G x 5/8''

Video-instructies

Lézard

  1. Vena coccygea ventralis: 22-25G, 1-1.5'' vidéo instruction
  2. Vena abdominalis ventralis: 22-25G, 1-1.5''
  3. Vena jugularis: surtout approprié pour les caméléons[3]

Schildpad

  1. Vena jugularis: rechter vene dikwijls groter dan links
  2. Subcarapaciale veneuze sinus: nuttig wanneer de kop niet kan gestrekt worden
  3. Vena coccygea dorsalis: hoog risico voor lymfecontaminatie
  4. Occipitale veneuze sinus
  5. Brachiale veneuze plexus, femorale veneuze plexus, femorale vene: dikwijls lymfecontaminatie

Video-instructies

Vogels

  • Gebruik heparine-tubes, hier kan zowel hematologie als biochemie op uitgevoerd worden.
  • Voor kleine dieren zijn micro-collectietubes aanbevolen.
  • Gebruik de kleinst mogelijke naalden: <50 g, 27-28G (insulinenaald).; >100 g, 25G naalden
  1. Vena jugularis: vooral rechter vene, opletten voor hematoom [http://partnersah.vet.cornell.edu/veterinarians/avian-diagnostic-sample-collection/blood-chicks Video-instructies kuiken}
  2. Vena basilica (vleugelvene): makkelijk hematoom maar zonder erge gevolgen Video-instructies kip
  3. Vena metatarsalis media (pootvene): te vermijden bij roofvogels Video-instructies eend

Video-instructies

Referenties

  1. ↑ Muro et al.: Effects of lithium heparin and tripotassium EDTA on hematologic values of Hermann's tortoises (Testudo hermanni). J. Zoo Wildl. Med. 1998;29:40-4. PMID: 9638624.
  2. ↑ Isaza et al.: Assessment of multiple cardiocentesis in ball pythons (Python regius). Contemp Top Lab Anim Sci 2004;43:35-8. PMID: 15636554.
  3. ↑ Cuadrado et al.: Comparison between tail and jugular venipuncture techniques for blood sample collection in common chameleons (Chamaeleo chamaeleon). Vet. J. 2003;166:93-7. PMID: 12788022.
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