Bloedafnametechniek per diersoort/fr: verschil tussen versies
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Versie van 15 dec 2014 om 16:26
Inhoud
Général
- Mettez tous les accessoires à portée de main.
- Désinfectez toujours l’endroit de ponction.
- Au niveau hygiène, le système vacutainer est idéal. *Pourtant la veine doit être assez large ainsi que l’espace de manœuvre pour la manutention de l’aiguille-adaptateur et du tube de prélèvement.
- Ne jamais plier les aiguilles.
- Afin d’éviter un hématome, appuyez assez longtemps sur l’endroit de ponction.
Mammifères
Chien
- Vena cephalica : instructions video
- Vena jugularis : 18-21G X 1''1, 5-20 cc
- Vena saphena
Chat
- Vena jugularis : 21-20G X 1,5''1, 5-10 cc vidéo instruction
- Vena cephalica
Lapin
- Enduisez d’abord de l’ EMLA crème (anesthésique local) sur la veine.
- Puisque le temps prothrombine est relativement court, le sang coagule rapidement. Prehéparinisation de l’aiguille et de la séringue peut éviter cela.
- Les tubes de micro collection sont recommandés.
- Vena jugularis : 22-27G, 1-5 cc, le plus utilisé, grand volume, plus difficile chez des animaux obèses ou avec plis de peau épais.
- Vena saphena lateralis : 22-27G, 1-2 cc
- Vena auricularis marginalis : 21-23G aiguille papillon, 1-2 cc
- Vena cephalica : réservé pour IV cathétérisation
Pour un résume des possibiltés voyez ces instructions vidéos
Furet
- Utilisez une sédation (midazolam, Isofluraan) si vous manquez d’expérience. Tenez compte des valeurs hématologiques réduites.
- La peau est épaisse surtout dans la nuque, donc utilisez une nouvelle aiguille à chaque ponction.
- Les tubes à micro collection sont recommandés.
- Vena jugularis : 25G, 1-3 cc, méthode plus courante pour un grand volume
- Vena cava cranialis : 25G, 1-3 cc, manière plus rapide pour un grand volume, le cœur est situé profondément dans le long thorax ; être sûr pour autant que l’animal ne bouge pas.
- Vena saphena : 22-30G, 1 cc, petits volumes (CBC, Hct, glucose).
- Vena cephalica : reservez pour IV cathétérisation.
Pour un résume des possibilités: voyez ces instructions vidéos
Cheval
- Vena jugularis instructions vidéo
Rund
- Vena coccygea ventralis Video-instructies
- Vena jugularis Video-instructies
Schaap en geit
- Vena jugularis Video-instructies
Varken
- Vena jugularis
- Vena cava cranialis
- 10 kg: 20G 1'' naald
- 45 kg: 18G 1.5'' naald
- 100 kg: 18G 2'' naald
- Zeug: 16G 4'' naald
- Vena coccygea ventralis: 20G 1'' naald, kleine volumes
- Vena auricularis: 20G 5/8'' naald, kleine volumes, makkelijk gecontamineerd
Reptielen
- Gebruik heparine-tubes, EDTA veroorzaakt hemolyse.[1] Een heparine-afname kan bovendien zowel voor hematologie als biochemie gebruikt worden.
- Micro-collectietubes aanbevolen
Slang
- Vena coccygea ventralis: 21-25G x 5/8-1''
- Cardiocentesis: 23-25G x 5/8-1''. Uit onderzoek by Pythons bleek seriele punctie goed verdragen te worden. [2]
- Vena palatina: 25G x 5/8''.
Hagedis
- Vena coccygea ventralis: 22-25G, 1-1.5'' Video-instructies
- Vena abdominalis ventralis:: 22-25G, 1-1.5''
- Vena jugularis: vooral geschikt bij kameleons [3]
Schildpad
- Vena jugularis: rechter vene dikwijls groter dan links
- Subcarapaciale veneuze sinus: nuttig wanneer de kop niet kan gestrekt worden
- Vena coccygea dorsalis: hoog risico voor lymfecontaminatie
- Occipitale veneuze sinus
- Brachiale veneuze plexus, femorale veneuze plexus, femorale vene: dikwijls lymfecontaminatie
Vogels
- Gebruik heparine-tubes, hier kan zowel hematologie als biochemie op uitgevoerd worden.
- Voor kleine dieren zijn micro-collectietubes aanbevolen.
- Gebruik de kleinst mogelijke naalden: <50 g, 27-28G (insulinenaald).; >100 g, 25G naalden
- Vena jugularis: vooral rechter vene, opletten voor hematoom [http://partnersah.vet.cornell.edu/veterinarians/avian-diagnostic-sample-collection/blood-chicks Video-instructies kuiken}
- Vena basilica (vleugelvene): makkelijk hematoom maar zonder erge gevolgen Video-instructies kip
- Vena metatarsalis media (pootvene): te vermijden bij roofvogels Video-instructies eend
Referenties
- ↑ Muro et al.: Effects of lithium heparin and tripotassium EDTA on hematologic values of Hermann's tortoises (Testudo hermanni). J. Zoo Wildl. Med. 1998;29:40-4. PMID: 9638624.
- ↑ Isaza et al.: Assessment of multiple cardiocentesis in ball pythons (Python regius). Contemp Top Lab Anim Sci 2004;43:35-8. PMID: 15636554.
- ↑ Cuadrado et al.: Comparison between tail and jugular venipuncture techniques for blood sample collection in common chameleons (Chamaeleo chamaeleon). Vet. J. 2003;166:93-7. PMID: 12788022.
